新型冠状病毒核酸临床检测要点及经验

导读：2019年12月以来，新型冠状病毒感染引起的肺炎病例数快速攀升。因患者体内病毒核酸的存在是目前唯一的确诊依据，而目前临床上普遍反映核酸检测阳性率不满意，故对病毒核酸检测的实验室条件、检验人员要求及检测过程中各个环节都有较高要求。本刊专家应斌武以通信作者在《国际检验医学杂志》发表文章“新型冠状病毒核酸临床检测要点及经验”，着重阐述新型冠状病毒核酸检测各个环节中的检测要点、最新的行业规范及共识内容，同时探讨临床检测中的疑难问题，以期为新型冠状病毒所致疾病的准确诊断提供理论依据。本文已被本刊录用并于2月27日在中国知网网络首发，转载、引用请注明出处。【引用格式】钟慧钰,赵珍珍,宋兴勃，等.新型冠状病毒核酸临床检测要点及经验[J/OL].国际检验医学杂志:1-8[2020-02-17].阅读全文请点击知网阅读链接：新型冠状病毒核酸临床检测要点及经验新型冠状病毒核酸临床检测要点及经验钟慧钰，赵珍珍，宋兴勃，陆小军，王旻晋，周易，宋佳佳，刘堂喻亨，巫丽娟，周汶静，叶远馨，斯艳君，周燕虹，陶昕彤，王念，应斌武△（四川大学华西医院实验医学科,四川成都 610041）2019新型冠状病毒（2019-nCoV/SARS-CoV-2，以下简称新冠病毒）是一种新型β属冠状病毒，属于单链RNA病毒，可引起人类呼吸道感染，其基因特征与严重急性呼吸综合征（SARS）相关冠状病毒和中东呼吸综合征（MERS）相关冠状病毒有明显区别，基因组序列约由29 kb构成，拥有10个基因，可有效编码10个蛋白[1]。该病毒感染人类引起的肺炎自2019年12月在湖北省武汉市发现以来,截至2月22日24时，据31个省（自治区、直辖市）及新疆生产建设兵团报告，现有确诊病例51 606例（其中重症病例10 968例）[2]。国际病毒分类委员会于2020 年2月12日正式将其命名为严重急性呼吸综合征冠状病毒2（SARS-CoV-2）。由于疫情发展迅速，及时对不同程度临床症状患者及疑似患者进行诊断需要快速有效的方法，而新冠病毒核酸检测可为诊断提供直接证据，在目前最新版本诊疗方案中，新冠病毒核酸的检出仍是唯一确诊依据[3]。由于是新发疾病，从新冠病毒所致感染病程到新冠病毒核酸检测技术等各个方面均缺乏大量科学数据支撑，在开展核酸检测过程中的各个环节中存在较多问题。本文将围绕目前新冠病毒核酸检测中的关键环节及其中可能影响核酸检测结果及时性、准确性的因素进行评述。1 新冠病毒核酸检测方法在疫情初期，最先检出新的病原体的方法是下一代测序技术/高通量测序技术(NGS)技术，并很快确定了新冠病毒的核酸序列。随着疫情发展，国内迅速研发出多种应用于新冠病毒核酸检测的试剂盒，绝大多数都基于实时荧光定量PCR（RT-PCR）技术。此外也有非常多的快速基因检测技术推出，如现场快速检验（POCT）技术、卡式荧光PCR技术等，整个检测流程缩短很长时间，有报道称最快可以节约3~4 h。和传统的RT-PCR技术相比，一体化现场快速检测确实便携、操作简单，但是如果过于强调其“快速”的特性，其灵敏度可能受影响，而现实的问题是传统PCR技术都受到“假阴性”结果的挑战，在现有条件下，时间的缩短可能会进一步带来一定程度的灵敏度降低。从技术角度看，在灵敏度和特异性的平衡上，相较一些快速检测方法，目前平衡性最好的是RT-PCR检测技术。从过往的重大疫情来看，无论是西非埃博拉病毒、甲流还是MERS，RT-PCR仍是各个部门主推的检测手段，目前国家已批准上市的试剂盒也均以RT-PCR技术为主。目前新冠病毒核酸检测针对的位点主要包含病毒基因组中3段保守基因序列，即以开放读码框1ab（ORF1ab）、 核 壳 蛋 白 （N）基因以及包膜蛋白(E)基因作为检测靶标，也有少数商品试剂盒同时检测刺突糖蛋白（S）基因。根据国家卫生健康委员会发布的新型冠状病毒感染的肺炎实验室检测技术指南（第五版），在实验室要确认一个病例为阳性，需满足同一份标本中新冠病毒的ORF1ab及N基因 2个靶标特异性RT-PCR检测结果均为阳性，或单靶标阳性患者重新采样/另一类型样本检测仍为单靶标阳性[4]，故实验室针对新冠病毒的核酸检测应至少包含最为保守及特异的ORF1ab区域以及N基因。2 新冠病毒核酸检测样本类型及病毒核酸检出情况2.1 不同样本类型中新冠病毒的核酸检测    在最新版诊疗方案中，其确诊所提到的核酸检测样本类型不仅包含呼吸道样本及血液样本，同时在实验室检查中增加“粪便样本中可检测新型冠状病毒核酸”[3]。新版实验室检测技术指南中，又将样本类型细分，呼吸道样本包含鼻咽拭子、咽拭子、鼻咽抽取物或呼吸道抽取物、深咳痰液、支气管灌洗液、肺泡灌洗液，消化道样本包含粪便及肛拭子，血液样本包含全血及血清标本，并分别有相应的采集及保存要求[4]。由于新冠病毒造成的肺炎为下呼吸道感染，对于已有症状及肺部CT改变的患者来说，下呼吸道样本（如深咳痰液、灌洗液等）为核酸检测首选，而在新冠肺炎不同的病程中取上呼吸道样本（如鼻咽拭子）也能检出病毒核酸。临床上由于多数患者咳痰困难，取下呼吸道灌洗液样本操作的生物安全风险极大，故呼吸道样本以鼻咽拭子及咽拭子为主，而拭子样本采用目前的RT-PCR试剂盒，据估计只有30%~50%的阳性检出率，大量的假阴性结果无法避免，必须进行多次取样检测或结合其他类型样本检查结果进行确诊。笔者所在研究团队对临床上的新冠病毒疑似病例分别采集不同类型呼吸道样本进行核酸检测，结果初步提示在新冠病毒感染者中，取咽拭子样本及深部痰样本的病毒核酸检出率之间有明显差异，咽拭子样本中新冠病毒阳性检出率低于深部咳痰。随着对新冠病毒核酸检测的科技攻关，目前已有较多报道提出在患者的粪便样本中可检出病毒核酸，粪便样本将成为临床患者筛查的重要样本类型[5-6]。目前笔者所在研究团队对呼吸道样本核酸检测确诊的患者进行治疗过程中及出院前的粪便样本进行核酸检测，结果显示粪便样本是患者诊疗过程中一种非常好的样本类型，其核酸检出的持续时间普遍较呼吸道样本更长，同时粪便中新冠病毒核酸阳性与患者的疾病进程发展具有重要的相关性，可能作为一种治疗疗效评估和出院标准的重要检测指标。2.2不同呼吸道样本取样材料对新冠病毒核酸检测结果的影响     目前相关的诊疗方案及实验室检测指南并未提及用于采集鼻咽拭子及咽拭子的拭子种类，但对于呼吸道样本的病毒核酸检测来说，不同的拭子及保存管很大可能将影响核酸检测结果，但相关影响因素尚未见报道。笔者所在研究团队初步在确诊患者中对比了带病毒保存液的植绒拭子样本及无病毒保存液的普通棉签拭子样本的新冠病毒核酸检测结果，发现普通棉签拭子的核酸检出率明显低于带病毒保存液的植绒拭子（P＜0.05），普通棉签拭子即便检出，其阳性CT值也明显大于植绒拭子。3 新冠病毒核酸检测样本核酸提取方法及病毒核酸检出情况新版新冠病毒实验室检测技术指南等文件中，并未明确提及或推荐新冠病毒样本的核酸提取方法，但由于目前临床常见鼻咽拭子样本存在核酸检出率较低的问题，对提取方法及提取流程进行有实验数据依据的选择及优化是有必要的，提取流程的优化可由各实验室根据自身情况及比对实验结果来进行。新冠病毒核酸检测所采用的RT-PCR是临床分子检测中常用的检测方法，在以往采用RT-PCR对病毒核酸进行的检测中，磁珠法是较为常用的核酸提取方法，普遍认为其对病原体的核酸提取具有简便、高效、提取浓度及纯度较高等优势[7-8]。此外因各实验室条件不同及各检测试剂盒要求，离心柱法、煮沸裂解法、一步裂解释放法等也在临床大量应用。不同的病毒核酸提取方法因其提取产物浓度、纯度的差别及对RNA的保护程度不同，将在一定程度上影响病毒核酸尤其是临界阳性样本的核酸检出。笔者所在研究团队初步对58例已确诊患者原始样本（均为带病毒保存液的咽拭子样本）同时采用不同提取方法后的核酸检测结果显示，分别采用离心柱法及磁珠法提取后，PCR检测的CT值无显著差异（P＞0.05）。4 新冠病毒核酸检测实验室生物安全要求4.1实验室及检验人员生物安全    自新冠肺炎疫情爆发以来，各医院检验科面对新冠病毒检测量增加、确诊/疑似病例和普通患者的标本不易区分、实验室空间限制、生物安全防护物资不足等各类问题，临床实验室特别是进行新冠病毒核酸检验的科室的生物安全防护措施尤为关键。目前国家卫生健康委员会对新冠病毒暂按照病原微生物危害程度分类中第二类病原微生物进行管理，根据最新版的新冠病毒实验室检测指南及实验室生物安全指南，如无法对原始样本进行可靠的灭活，则对其进行的核酸检测应当在生物安全二级实验室进行，同时采用生物安全三级实验室的个人防护（建议至少穿戴工作服、一次性工作帽、双层手套、医用一次性防护服、医用防护口罩或动力送风过滤式呼吸器、防护面屏或护目镜、工作鞋或胶靴、防水靴套），各实验室还可根据自身情况增加进一步的防护[9]；同时标准预防、不定期通风和手卫生等重要的防护措施必不可少。在物资匮乏及实验室条件不足等限制下，实验室可根据物资短缺的情况，对检验标本及检验岗位等启动分级分层的生物安全防护预案，根据拟定的不同防护级别，最大程度满足生物安全防护要求。如针对不同的检验岗位，建议至少应保证对确诊患者、疑似患者标本进行呼吸道标本病毒核酸提取和抗原检测的相关人员的核心防护，即三级生物安全防护、二级生物安全柜，有条件时应佩戴正压防护头套及在负压实验室中操作，其他实验室检测人员酌情采取重点防护或标准防护[10]。同时应加强所有实验室人员的安全意识，在日常进行新冠病毒核酸检测的实验室内，所有实验人员均应严格遵循新冠病毒实验室生物安全指南中的相应要求，结束核酸检测工作后，对进行新冠病毒核酸检测操作的安全柜、台面及实验室环境及时进行有效的消毒；同时应严格按照相关文件要求进行防护装备的脱卸，注意尽量少地触碰到污染面，且脱卸的每一步后均应有手消毒，防护服、医用帽及医用口罩等一次性物品尽量不重复使用，在全部脱卸完成后，再进行相应的手卫生及消毒。对于严格分区的实验室，在相应区域完成防护装备脱卸及手卫生即可进入清洁区，未严格分区的实验室中检验人员在完成防护装备脱卸及手卫生后，还可增加其他有效的消毒措施[11]。4.2原始样本的灭活及对核酸检测的影响    新冠病毒实验室检测指南中未对原始样本的有效灭活条件进行规定或建议，在目前最新的新冠病毒核酸检测专家共识中，建议采用56 ℃水浴45 min，并可根据提取试剂在标本裂解时所采用的温度调整灭活温度，但不低于56 ℃，此条件是依据以往对MERS等病毒灭活条件的研究。同时专家共识也建议各实验室对原始样本的灭活条件有预实验结果的支持[12]。由于目前常见样本类型的新冠病毒核酸阳性检出率仍不高，故任何可能降低病毒核酸提取效果及检出率的因素，如样本灭活条件及灭活时间等均应引起重视。此前，华中科技大学附属同济医院检验科的专家学者对PCR检测病毒核酸（以乙型流感病毒为例）进行了相应的小样本量比对，结果发现未灭活处理、56，℃水浴30，min及50，℃干浴1 h的同一样本其PCR检测阳性结果的扩增曲线CT值无明显变化，可作为新冠病毒样本灭活的参考。根据笔者所在研究团队对20例新冠病毒感染者的同一阳性样本分别进行56 ℃干浴30 min及65 ℃干浴30 min后，其PCR检测的阳性CT值无明显差异（P>0.05），该研究结果尚未发表。5 新冠病毒核酸检测结果判读根据目前最新版新冠病毒诊疗指南、防控方案及实验室检测专家共识，对新冠病毒的核酸检测均应至少检测ORF1ab及N基因（或E基因），检测的通道同时阳性时可判定为阳性，并均提到阴性结果不能排除新冠病毒感染，应考虑各环节中导至假阴性的原因。同时在第五版实验室检测技术指南中，对于单通道阳性结果，不仅要求重新采样及检测，对结果判定也增加了新的要求，即重新检测结果仍为单通道阳性时，判定核酸检测结果为阳性；同时增加了2种类型样本均检测得到单靶标阳性结果时，应判定核酸检测结果为阳性[4]。对于临床新冠病毒核酸检测中经常出现的单靶标阳性结果，可有如下几点考虑。首先，不同厂家双位点RT-PCR试剂盒对于新冠病毒N蛋白基因的扩增灵敏度可能高于ORF1ab检测，将可能导至部分病毒含量较低的样本检测结果为单通道阳性。此外，专研SARS病毒的专家学者认为，理论上讲新冠病毒的mRNA转录模式与SARS类似，在细胞中新冠病毒的mRNA数倍于病毒的基因组RNA，且将转录出不同长度的mRNA，这些mRNA都带有N基因，而只有少数带有ORF1ab；目前的试剂盒实际检测多为细胞内的病毒mRNA，因患者样本中N基因mRNA的拷贝数远高于ORF1ab基因，故在新冠病毒拷贝数较低的情况下，N基因检测单通道阳性的比例较高。再次，N基因在新冠病毒的核酸序列中保守程度不及ORF1ab，故还可能存在少数样本由于其他冠状病毒等的核酸序列与其有交叉，导至N基因扩增阳性而ORF1ab阴性。6 结论综上所述，目前新冠病毒所致疾病其病理过程及临床病程还未完全阐明，实验室检测路径未标准化，加上其核酸检测试剂盒研发时间紧迫，没有足够的评估及大样本的临床验证，检测效果良莠不齐，故对于临床上新冠病毒核酸检测结果为阴性或单通道阳性的样本均需要谨慎对待，考虑到各环节中可能造成结果不准确的影响因素。各临床实验室应在现有研究报道及文件和指南的基础上，根据自身条件对新冠病毒核酸检测全过程进行严格的质量控制及合理的优化。同时，目前实验室已开始检测新冠病毒IgM及IgG抗体，更灵敏的核酸检测方法如数字PCR也开始应用于新冠病毒的核酸检测，部分研究团队着力于探索更加高效的新冠病毒实验室诊断模型，有望在新冠病毒的实验室检测方面大大降低假阴性率，并为更好更快地确诊新冠病毒感染者提供事实依据。
（责任编辑：xsq）